Méthode de culture tissulaire d'anthurium

Les extrémités des pousses, les segments de tige, les jeunes feuilles et les pétioles d'anthurium peuvent être utilisés comme explants de culture tissulaire. Les explants ont été rincés à l'eau courante, trempés dans de l'alcool à 75 % pendant environ 20-30 secondes, rincés à l'eau stérile, puis stérilisés avec 0,1 % de chlorure mercurique pendant 8-10 minutes, et lavés avec de l'eau stérile pour éliminer la solution de stérilisation. Absorber l'eau de surface avec du papier filtre stérile, les couper en tailles appropriées et les inoculer pour la culture. Différents explants ont différentes manières d'induire la régénération. L'utilisation de pointes de pousses ou de bourgeons peut induire directement des bourgeons adventifs ou des bourgeons latéraux. La culture de la feuille, du pétiole ou du segment de tige induit d'abord un cal, puis se différencie pour former des bourgeons ou des embryons somatiques.

Le milieu était MS, 1/2 MS ou MS modifié. Le milieu MS modifié, l'augmentation ou la diminution de certains composants du milieu MS et la réduction de la quantité de nitrate d'ammonium ont eu un meilleur effet d'induction sur l'anthurium. Le milieu est additionné de 30 g/L de saccharose, de 8-10 g d'agar comme coagulant et le pH est de 5,8. La régulation hormonale est la plus critique, l'anthurium est plus sensible aux hormones et a un effet cumulatif évident. Pour l'induction et la culture des bourgeons, 6-BA1-3 mg/L et NAA 0.1-0.2 mg/L peuvent être utilisés. Lors de la culture avec des feuilles, utilisez d'abord 6-BA 1.0 mg/L et 4-D 0.1 mg/L pour induire la formation de callosités, puis transférez-le dans 6-BA 1.0 mg/L plus NAA 0,1 mg/L. Le milieu de différenciation induit la formation de pousses.

Dans les premiers jours après l'inoculation, ombragez-vous correctement, utilisez des lampes fluorescentes pour compléter la lumière pendant {{0}} heures et la température est de 25 degrés. Après environ 45 jours de culture, après l'apparition de germes ou de cals, repiquage en flacons roulants. Culture de prolifération Après 40-50 jours de culture d'induction, le système de culture stérile établi est cultivé dans une fiole centrifuge pour proliférer et favoriser la formation de bourgeons. Le milieu peut être MS ou MS modifié plus 30 g/L de saccharose plus 7 g/L de gélose plus 6-BA 0,5-1 mg/L plus NAA 0,5 mg/L, et culture pour une génération en une journée environ. Les conditions de culture étaient les mêmes que précédemment.

Semis solides et culture d'enracinement Au cours du processus de multiplication et de culture, les germes sont brisés et cultivés, et la quantité d'hormones peut être réduite lorsque la croissance atteint une certaine quantité. Après avoir cultivé des semis solides pendant {{0}} générations, ajoutez du milieu IBA 0.1 mg/L ou NAA 0,1 mg/L pour favoriser la formation des racines ; après 7-10 jours de culture sur un milieu d'enracinement, les racines aériennes pousseront à la base et formeront progressivement un système racinaire, environ 30-40 jours, et pousseront encore jusqu'à 3-4 cm.

La lumière auxiliaire pendant cette période peut rendre les semis plus robustes. Après le repiquage et l'élevage des semis dans la serre, les semis sont retirés et le milieu sur les semis peut être lavé à l'eau puis transplanté. Le substrat de repiquage peut être un mélange de 3 parties de tourbe, 1 partie de perlite et 1 partie de son de noix de coco, ou du sable de rivière, de la boue de composition florale cassée, etc. Après la plantation, arrosez abondamment avec 800-1000 fois de chlorothalonil, et vaporisez de l'eau pour hydrater. Ombre modérée au début du repiquage et pulvérisation d'engrais foliaire tous les 7-10 jours après la survie de croissance. Vaporisez régulièrement du carbendazime et du chlorothalonil pour prévenir les maladies. Au stade de semis, les feuilles et les tiges sont relativement tendres et il y a souvent des dangers tels que les vers gris et les escargots.